Euroinnova Business School

CURSO TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR

CURSO TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR: Curso Online de Análisis de Biología Molecular en Muestras Biológicas
Curso Online de Análisis de Biología Molecular en Muestras Biológicas. Contenido adaptado al Real Decreto RD 983/2013, de 13 de diciembre. No dude en ponerse en contacto con nosotros si tienes alguna duda o quiere inscribirse en este u otros cursos relacionados.

CURSO TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR
Modalidad
Modalidad
Online
Duración - Créditos
Duración - Créditos
120 horas
Becas y Financiación
Becas y Financiación
Sin Intereses
Plataforma Web
Plataforma Web
Equipo Docente Especializado
Equipo Docente Especializado
Acompañamiento Personalizado
Acompañamiento Personalizado

CURSO TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR: Con el CURSO ONLINE DE ANÁLISIS DE BIOLOGÍA MOLECULAR EN MUESTRAS BIOLÓGICAS sabrá cómo aplicar técnicas de separación y purificación de fragmentos de ADN y de proteínas mediante electroforesis y técnicas de PCR y de RT-PCR, teniendo en cuenta protocolos e indicando sus aplicaciones, entre otras técnicas.

PARA MATRICULARTE INTRODUCE TU EMAIL
MÉTODO DE PAGO
Tarjeta
Tarjeta
VisaMasterCardAmerican ExpressDinersClub InternationalMaestrovisaelectron
Pagar
Amazon Pay
Pagos por transferencia en linea
Pagos por transferencia en linea
Transferencia
Pago a Plazos
Pago a Plazos
VisaMasterCardAmerican ExpressDinersClub Internationalvisaelectron
5068 UYU / mes en Cuotas, SIN INTERESES
Pagar
5068 UYU / mes en Cuotas, SIN INTERESES
En el siguiente punto se procedera con la forma de pago
Pago Seguro Euroinnova
Últimas becas
RELLENA TUS DATOS
Y TE LLAMAMOS GRATIS
+34

Información básica sobre Protección de Datos aquí

Certificado de Aprovechamiento de haber cursado la formación que le Acredita las Unidades de Competencia recogidas en el Módulo Formativo MF1740_3 Análisis de Biología Molecular en Muestras Biológicas, regulado en el Real Decreto RD 983/2013, de 13 de diciembre, por el que se establece el Certificado de Profesionalidad AGAN0212 Realización de Procedimientos Experimentales con Animales para Investigación y Otros Fines Científicos.

Si lo desea puede solicitar la Titulación con la APOSTILLA DE LA HAYA (Certificación Oficial que da validez a la Titulación ante el Ministerio de Educación de más de 200 países de todo el mundo. También está disponible con Sello Notarial válido para los ministerios de educación de países no adheridos al Convenio de la Haya.

Curso Online EuroinnovaCurso en linea Curso  homologado CURSO TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULARCurso en linea Curso  homologado Titulación con la APOSTILLA de la HayaMiembro de CLADEA - Consejo Latinoamericano de Escuelas de Administración

EURO - EUROINNOVA - Privados
Manual MF1740_3 Analisis de Biologia Molecular en Muestras BiologicasCurso Online 100% Calidad
¿Te interesa esta formación?
¡MATRICULATE YA!
SOLICITAR INFO
  1. Tipos de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
  2. ? Extracción de ADN (a partir de sangre, tejidos o células en cultivo, células bucales,?)
  3. ? Extracción de ARN (mediante tiocianato de guanidina, urea-cloruro de lítio, purificación de poli(A)-ARN,
  4. Determinación analítica. Perfil analítico. Cartera de servicios.
  5. ? Determinación de ácidos nucleicos
  6. ? Separación analítica y preparativa del ADN (electroforesis analítica, geles de agarosa, ?)
  7. Errores más comunes en la manipulación de las muestras.
  8. ? Identificación y etiquetado de las muestras
  9. ? Contaminación (por RNAsas, DNA,?)
  10. ? Degradación enzimática
  11. Características generales de la obtención y procesamiento de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
  12. ? Obtención de ADN y ARN a partir de tejidos líquidos (anticoagular)
  13. ? Inhibidores RNAsas
  14. Prevención de riesgos en la obtención, manipulación y procesamiento de muestras biológicas.
  15. ? Recepción o toma de muestras. Medidas preventivas
  16. ? Precauciones generales relativas al laboratorio
  17. ? Precauciones durante el desarrollo del trabajo
  18. ? Reglas de higiene personal
  1. Etiquetado e identificación de las muestras.
  2. Sistemas y formatos de archivos. Sistemas de almacenamiento.
  3. Equipos de almacenamiento (-20ºC, - 80º C)
  4. Transporte de muestras (ADN: descongeladas, tubos estabilizadores ARN, tiempo de transporte recomendado 72 horas. ARN, congelado mediante agentes crioprotectores y con inhibidores de ARNAsas).
  5. Prevención de riesgos en la conservación y transporte de muestras biológicas.
  6. ? Precauciones durante el desarrollo del trabajo
  7. ? Reglas de higiene personal
  8. ? Almacenamiento de muestras biológicas. Zonas de acceso restringido. Contenedores específicos. Manejo con EPIs
  9. ? Transporte de material biológico. Sistema básico de embalaje. Identificación
  1. Composición molecular, estructura y función de los ácidos nucleicos.
  2. ? Composición química y estructura de los ácidos nucleicos: Nucleótidos de importancia biológica y Factores que estabilizan la doble hélice
  3. ? Funciones de los ácidos nucleicos
  4. Descripción de las enzimas asociadas a los ácidos nucleicos.
  5. ? Endonucleasas (Tipo 1 y 2)
  6. ? Polimerasas
  7. ? Ligasas
  8. ? Nucleasas
  9. ? Fosfatasas
  10. ? Quinasas
  11. ? ARNasas
  12. Replicación del ADN.
  13. ? Modo semiconservativo
  14. ? Horqueta de replicación
  15. ? Enzimas que intervienen en el proceso
  16. ? Molécula accesoria: Iniciador
  17. Transcripción del ADN y su control.
  18. ? Proceso: Cadena molde o antisentido. ARNm o transcripto primario. Enzima que dirige: polimerasa de ARN
  19. ? Modificaciones postranscripcionales.
  20. Mecanismos de reparación del ADN.
  21. ? Agentes genotóxicos y mecanismos de reparación del DNA
  22. ? Reparación de dímeros de pirimidinas mediante fotoreactivación
  23. ? Remoción de grupos metilo
  24. ? Bases mal apareadas
  25. ? Metilación del DNA
  26. ? Reparación del DNA durante o después de su replicación
  27. ? Reparación de cortes en ambas cadenas del DNA
  28. ? Sistemas De reparación de DNA: NER (Nucleotide Excision Repair)
  29. ? Mecanismos de reparación de DNA: BER (Base escisión Repair)
  30. Mutaciones del ADN, alteraciones en las proteínas que sintetizan y enfermedades asociadas.
  31. ? Alteraciones que puede sufrir el ADN: Mismatch (mal apareamiento), Desaminación, Pérdida de bases, Unión covalente entre bases de la misma cadena, Unión de grupos alquilo, Ruptura de simple cadena (nick) y Ruptura de doble cadena
  32. ? Alteraciones en las proteínas que se sintetizan y enfermedades asociadas. Desnaturalización
  33. Estructura y función de las proteínas.
  34. ? Aminoácidos y neurotransmisores
  35. ? Enlaces peptídicos, oligopeptidos y polipeptidos
  36. ? Estructura primaria, secundaria , terciaría y cuaternaria
  37. ? Funciones de las proteínas: estructural, reguladora, de transporte, de reserva, enzimática, mensajera y de receptores químicos
  38. Transcripción y traducción.
  39. ? Moléculas implicadas en la transcripción y traducción de las proteínas
  40. ? Fases de la transcripción de las proteínas
  41. ? Fases de la traducción de las proteínas
  42. ? Regulación de la transcripción y traducción
  43. Síntesis y modificación de las proteínas.
  44. ? Moléculas implicadas en la síntesis y traducción de las proteínas
  45. ? Fases de la síntesis de las proteínas
  46. ? Fases de la modificación de las proteínas
  47. ? Regulación de la síntesis y modificación de las proteínas
  48. Alteraciones conformacionales de las proteínas.
  49. ? Serpinopatías
  50. ? Proteínas priónicas
  51. ? Neuroserpinas
  52. ? Hemoglobina
  53. ? Repeticiones de glutamato
  54. ? Proteína Tau
  55. ? Inmunoglobulinas cadenas ligeras
  56. ? Proteína CFRT Péptido B-amiloide
  57. ? Superóxido dismutasa
  58. ? B2 microglobulina
  1. Electroforesis.
  2. ? Tipos de electroforesis: unidimensionales, bidimensionales y técnicas relacionadas.
  3. ? Separación electroforética de las proteínas séricas. Patrones de normalidad y de alteración
  4. ? Características del material y de los reactivos. Averías o disfunciones
  5. Técnicas cromatográficas.
  6. ? Características de los equipos. Condiciones de uso y mantenimiento
  7. ? Calibración. Averías o disfunciones
  8. ? Características del material y de los reactivos
  9. Técnicas de inmunodetección.
  10. ? Inmunocitoquímica
  11. ? Western blot
  12. ? Inmunoprecipitación
  13. ? Co-inmunoprecipitación
  14. ? Pull-down
  15. ? TUNEL
  16. Espectrometría de masas.
  17. ? Fundamento y aplicaciones.
  18. ? Características de los equipos.
  19. ? Condiciones de uso y mantenimiento. Calibración. Averías o disfunciones.
  20. ? Características del material y de los reactivos.
  21. Tecnología de microarrays y chips de proteínas.
  22. ? Microarrays de ADN: Diseño de un microarrays de ADN. Tipos
  23. ? Microarrays de Proteínas: Diseño de un microarrays de proteínas. Tipos
  24. ? Microarrays de Carbohidratos: Diseño de microarrays de carbohidratos. Aplicaciones
  25. ? Microarrays de Células
  26. ? Microarrays de Tejidos
  27. ? Perspectivas de mercado de los microarrays y biochips en el área de salud humana
  28. Bioinformática. Bases de datos de proteómica.
  29. ? Genómica funcional
  30. ? Relación entre la biología y la informática
  31. ? Biochips
  32. ? Bioinformática
  33. ? Bibliografía
  1. Extracción. Purificación y análisis espectroscópico y electroforético de ácidos nucleicos.
  2. ? Material y métodos
  3. Amplificación de ADN mediante PCR y variantes.
  4. ? El ADN
  5. ? Los enzimas
  6. ? Los nucleótidos
  7. ? Los cebadores
  8. ? Limitaciones y problemas de la PCR (tamaño secuencias limitado, PCR previa, contaminación, inespecifidad de cebadores,?)
  9. Electroforesis y técnicas relacionadas.
  10. ? Factores que afectan a la movilidad del ADN en el gel (masa molecular, voltaje, composición de las bases, temperatura, solución amortiguadora,?)
  11. ? Tipos de electroforesis: PFGE (Pulsed Field Gel Electroforesis), OFAGE (Orthogonal Field Alternative Gel), FIGF (Field Inversion Gel Electroforesis), CHEF (Contour Clamped Homogeneus Electric Field), Electroforesis preparative.
  12. ? Aplicaciones: Análisis comparativos de patrones de restricción cromosómicos, construcción de mapas cromosómicos, topología y tamaño de cromosomas, análisis de elementos extracromosómicos
  13. Hibridación de ácidos nucleicos.
  14. ? Factores que influyen en la hibridación.
  15. ? Composición de las bases.
  16. ? Concentración de ADN/ARN y tiempos Cot y Rot
  17. ? Concentración y tamaño de la sonda
  18. ? Concentración ADN diana
  19. ? Desnaturalización del ADN diana y fijación a un soporte.
  20. ? Marcaje de una sonda monocadena
  21. ? Hibridación: mezcla y renaturalización
  22. ? Detección de los híbridos
  23. ? Medio de reacción
  24. ? Polímeros inertes
  25. ? Tiempos de hibridación y mecanismos de detección.
  26. ? Tipos de hibridación (soporte sólido, en fase líquida, in situ, in situ sobre cromosomas, in situ de bacterias para clonaje).
  27. Análisis de fragmentos de ADN.
  28. ? Método Southerm
  29. ? Métodos de transferencia (por capilaridad, por vacío, electroforético)
  30. ? Aplicaciones del Método Southerm
  31. ? Mapas de restricción
  32. ? Detección de polimorfismos (RFLP, VNTR, STR) y deleciones.
  33. Secuenciación.
  34. ? Secuenciación química, método de Maxam y Gilbert
  35. ? Secuenciación enzimática, método de Sanger o de los dideoxinucleótidos.
  36. ? Tipos de secuenciaciones enzimáticas (Cíclica, múltiple, automática, quimioluminiscente)
  37. Tecnología de microarrays y chips de ácidos nucléicos.
  38. ? Utilidad: analizar el genoma completo de un organismo
  39. ? Fundamento: hibridación con sondas
  40. ? Soporte: placas microtitulación o membranas de blotting
  41. ? Fabricación: pueden ser creados en el laboratorio o usando robótica : Macroarray: señales > 300 micras y Microarray: pocillos < 200 micras
  42. Aplicaciones: identificación de secuencias (genes, Mutaciones), determinación del nivel de expresión génica, descubrimiento de genes, diagnóstico de enfermedades, Farmacogenómica: desarrollo de Fármacos y Toxicogenómica: investigación Toxicológica
  43. Bioinformática. Bases de datos de genómica.
  44. ? Introducción a la Bioinformática
  45. ? Consulta de Bases de datos en biología molecular
  46. ? Alineamiento de secuencias
  47. ? Predicción de genes
  48. ? Introducción a los microarrays de DNA
  1. Genoma: células, cromosomas y genes.
  2. ? Definición de genoma, gen y cromosoma
  3. ? Organización, estabilización y localización del genoma
  4. Estructura y función de los genes y cromosomas.
  5. ? Estructura del ADN
  6. ? Estructura del ARN
  7. ? El código genético
  8. ? Secuencias codificantes versus no codificantes
  9. Bases cromosómicas de la enfermedad.
  10. ? Citogenética. El cariotipo normal en los roedores de laboratorio
  11. ? Anomalías del número de cromosomas (Heteroploidías)
  12. ? Anomalías de la estructura de los cromosomas
  13. Herencia y enfermedad: enfermedades monogénicas, patrones de herencia, enfermedades poligénicas. Susceptibilidad genética.
  14. ? Genético
  15. ? Congénito
  16. ? Hereditario
  17. Genética de las enfermedades comunes.
  18. ? Modelos provenientes de mutaciones espontáneas o inducidas
  19. ? Modelos generados por transgénesis
  20. ? Modelos generados in Vitro por manipulación de células ES
  21. ? Modelos generados por transgénesis condicional
  22. Genética de la reproducción y del diagnóstico prenatal.
  23. ? Modelos animales del desarrollo embrionario
  24. ? Diagnóstico prenatal rápido de aberraciones cromosómicas por PCR
  25. ? Diagnóstico citogenético
  26. ? Diagnóstico prenatal de enfermedades hereditarias
  27. Diagnóstico en medicina legal y forense.
  28. ? VNTR
  29. ? STR
  30. Modelos animales de enfermedad de base genética.
  31. ? Modelos murinos de enfermedades hereditarias simples (mendelianas): Desórdenes de la visión, de la audición, neurológicos y neuromusculares. Enfermedades de los huesos y cartílagos, de la piel y el pelo, hematológicas, inmunodeficiencias y metabólicas
  32. ? Modelos murinos de enfermedades hereditarias complejas (multigénicas): Cáncer, obesidad, diabetes, etc.

Media de opiniones en los Cursos y Master online de Euroinnova

Nuestros alumnos opinan sobre el Curso en linea MF1740_3 Analisis de Biologia Molecular en Muestras Biologicas

Media de opiniones de los Cursos y Master Euroinnova
Opinión de Tomás C. D.
Sobre UF2078 Extraccion, Amplificacion, Secuenciacion y Caracterizacion de Acidos Nucleicos, Proteinas y otros Metabolitos Aplicando Tecnicas de Biologia Molecular
BADAJOZ
Me ha parecido muy útil e interesante.
Opinión de Tomás C. D.
Sobre Maestria Internacional en Biologia Molecular y Citogenetica
BADAJOZ
Me ha parecido muy útil e interesante.
Opinión de Daniel T. A.
Sobre Perito Judicial en Biologia Molecular y Citogenetica + Titulacion Universitaria en Elaboracion de Informes Periciales (Doble Titulacion con 5 Creditos ECTS)
SORIA
Todo perfecto. Ya he realizado varios cursos con Euroinnova y pienso repetir!
Opinión de CRISTINA O. R.
Sobre Especialista en Biologia Molecular y Citogenetica
SEGOVIA
Contenidos bastante completos y fáciles de entender. Muy recomendado.
* Todas las opiniones sobre el Curso en linea MF1740_3 Analisis de Biologia Molecular en Muestras Biologicas, aquí recopiladas, han sido rellenadas de forma voluntaria por nuestros alumnos, a través de un formulario que se adjunta a todos ellos, junto a los materiales, o al finalizar su curso en nuestro campus Online, en el que se les invita a dejarnos sus impresiones acerca de la formación cursada.
Resumen salidas profesionales de curso tecnicas de biologia molecular:

En el ámbito de agraria, es necesario conocer los diferentes campos de la realización de procedimientos experimentales con animales para investigación y otros fines científicos, dentro del área profesional ganadería. Así, con el presente curso se pretende aportar los conocimientos necesarios para realizar análisis de biología molecular en muestras biológicas.

Objetivos de curso tecnicas de biologia molecular:

- Aplicar técnicas de extracción, cuantificación y purificación de ADN y/o ARN en muestras biológicas, siguiendo protocolos y normas de seguridad.
- Aplicar técnicas de extracción, cuantificación y purificación de proteínas en muestras biológicas, siguiendo protocolos y normas de seguridad.
- Aplicar técnicas de separación y purificación de fragmentos de ADN y de proteínas mediante electroforesis.
- Aplicar técnicas de separación e identificación de proteínas mediante técnicas de cromatografía, inmunodetección y proteómica.
- Aplicar técnicas de PCR y de RT-PCR, teniendo en cuenta protocolos e indicando sus aplicaciones.
- Aplicar técnicas de hibridación con sondas genéticas y de análisis de fragmentos de ADN, siguiendo protocolos preestablecidos.
- Aplicar la técnica de secuenciación de fragmentos de ADN según protocolos preestablecidos.
Salidas profesionales de curso tecnicas de biologia molecular:

Desarrolla su actividad profesional por cuenta ajena en organismos e instituciones públicas o privadas que realizan actividades de experimentación con animales, preferentemente laboratorios de experimentación biológica y unidades de estabulación de animales para la experimentación, en unidades de investigación hospitalarias, farmacéuticas, institutos de investigación y centros de toxicología y de medio ambiente, centros de enseñanza universitaria, empresas de biotecnología y de servicios a I+D, así como en empresas suministradoras de animales para experimentación, dependiendo de un superior responsable de los procedimientos para la experimentación y otros fines científicos.

Para qué te prepara el curso tecnicas de biologia molecular:

La presente formación se ajusta al itinerario formativo del Módulo Formativo MF1740_3 Análisis de Biología Molecular en Muestras Biológicas, certificando el haber superado las distintas Unidades de Competencia en él incluidas, y va dirigido a la acreditación de las Competencias Profesionales adquiridas a través de la experiencia laboral y de la formación no formal, vía por la que va a optar a la obtención del correspondiente Certificado de Profesionalidad, a través de las respectivas convocatorias que vayan publicando las distintas Comunidades Autónomas, así como el propio Ministerio de Trabajo (Real Decreto 1224/2009 de reconocimiento de las competencias profesionales adquiridas por experiencia laboral).

A quién va dirigido el curso tecnicas de biologia molecular:

Este curso está dirigido a los profesionales del mundo de la agraria, concretamente en realización de procedimientos experimentales con animales para investigación y otros fines científicos, dentro del área profesional ganadería, y a todas aquellas personas interesadas en adquirir conocimientos necesarios para realizar análisis de biología molecular en muestras biológicas.

Metodología de curso tecnicas de biologia molecular:
Metodología Curso Euroinnova
Carácter oficial de la formación:
La presente formación no está incluida dentro del ámbito de la formación oficial reglada (Educación Infantil, Educación Primaria, Educación Secundaria, Formación Profesional Oficial FP, Bachillerato, Grado Universitario, Master Oficial Universitario y Doctorado). Se trata por tanto de una formación complementaria y/o de especialización, dirigida a la adquisición de determinadas competencias, habilidades o aptitudes de índole profesional, pudiendo ser baremable como mérito en bolsas de trabajo y/o concursos oposición, siempre dentro del apartado de Formación Complementaria y/o Formación Continua siendo siempre imprescindible la revisión de los requisitos específicos de baremación de las bolsa de trabajo público en concreto a la que deseemos presentarnos.
Comparte con tus amigos: Compartir en Facebook Compartir en Twitter Compartir en Whatsapp Compartir en Linkedin
Es tu momento.
Continúa creciendo profesionalmente con Euroinnova
¡MATRICULATE YA!
Foto docente
Francisco Antonio Navarro Matarin
MASTER SUPERIOR EN PREVENCIÓN DE RIESGOS LABORALES, (Tres especialidades), MASTER SUPERIOR EN PREVENCIÓN DE RIESGOS LABORALES - Especialidad Ergonom...
Leer más
Linkedin Euroinnova Twitter Euroinnova Google Scholar Euroinnova
Foto docente
Rogelio Delgado Mingorance
Titulado Universitario 2 ciclo o Licenciado - Ingeniero de Organización Industrial, Titulado Universitario 1 ciclo o Diplomado - Ingeniero Técnico e...
Leer más
Linkedin Euroinnova Twitter Euroinnova Google Scholar Euroinnova
Foto docente
Vanesa Junco Castillo
Titulado Universitario 2 ciclo o Licenciado - Licenciado en Ciencias Ambientales
Linkedin Euroinnova Twitter Euroinnova Google Scholar Euroinnova

Blogs relacionados con mf1740_3 analisis de biologia molecular en muestras biologicas online